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还原糖测定dns

DNS法即二硝基水杨酸法,是利用碱性条件下,二硝基水杨酸与还原糖发生氧化还原反应,生成棕红色物质,用比色法测定还原糖含量。

1、实验原理

3,5-二硝基水杨酸(DNS)在碱性条件下(通常含有NaOH和丙三醇)与还原糖共热后,被还原生成氨基化合物。

在过量的NaOH碱性溶液中,此氨基化合物呈桔红色,在540nm波长处有最大吸收,在一定浓度范围内,还原糖的量与反应液的颜色强度呈正比,通过比色法可测定样品中的还原糖含量。

2、试剂配制

DNS试剂的配制

甲液:溶解6.9克结晶酚于15.2毫升10%氢氧化钠溶液中,用水稀释至69毫升,再加入15.2毫升10%氢氧化钠溶液。

乙液:称取255克酒石酸钾钠溶于300毫升10%氢氧化钠溶液中,再加入880毫升10%氢氧化钠溶液。

丙液:称取10克DNS溶于200毫升水中,煮沸溶解(加热时注意安全)。

DNS试剂:将上述甲、乙、丙三种溶液混合即得黄色试剂,贮于棕色瓶中,室温放置7天后使用。

葡萄糖标准溶液:精确称取干燥恒重的葡萄糖1.000克,加蒸馏水溶解并定容至1000毫升,得到1毫克/毫升的葡萄糖标准溶液。

还原糖测定dns

3、操作步骤

制作标准曲线

取7支大试管,分别加入0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2毫升葡萄糖标准溶液,用蒸馏水补足至2毫升。

向每管加入1.5毫升DNS试剂,混匀后沸水浴加热5分钟,冷却至室温,加水定容至25毫升,以空白管调零点,在540nm波长下测吸光度,绘制标准曲线。

样品测定

准确吸取待测样品溶液2毫升于试管中,加入1.5毫升DNS试剂,混匀后沸水浴加热5分钟,冷却至室温,加水定容至25毫升。

在540nm波长下测吸光度,从标准曲线中查出相应的还原糖毫克数。

4、数据记录与处理

还原糖测定dns

记录各标准溶液和样品溶液的吸光度值,绘制标准曲线(以还原糖浓度为横坐标,吸光度值为纵坐标)。

根据样品溶液的吸光度值,在标准曲线上查出对应的还原糖浓度。

计算样品中还原糖的含量(如以葡萄糖计,可根据样品的稀释倍数和取样量计算出还原糖的质量分数)。

5、注意事项

DNS试剂应现配现用,存放时间过长会影响显色效果。

加热过程中要注意防止溶液爆沸溅出,确保安全。

比色时,溶液应冷却至室温,以保证吸光度测量的准确性。

不同品牌的DNS试剂可能存在差异,使用前需进行校准或验证。

还原糖测定dns

试剂名称 用量 作用
甲液(结晶酚溶液) 6.9克结晶酚溶于15.2毫升10%氢氧化钠溶液中,稀释至69毫升 参与显色反应
乙液(酒石酸钾钠溶液) 255克酒石酸钾钠溶于300毫升10%氢氧化钠溶液中,再加880毫升10%氢氧化钠溶液 参与显色反应
丙液(DNS溶液) 10克DNS溶于200毫升水中 参与显色反应
葡萄糖标准溶液 1.000克葡萄糖定容至1000毫升 制作标准曲线

以下是关于还原糖测定DNS法的问题解答:

1、DNS法测定还原糖的原理是什么?

DNS法测定还原糖的原理是在碱性条件下(通常含有NaOH和丙三醇),3,5-二硝基水杨酸(DNS)与还原糖共热后,被还原生成氨基化合物,该化合物在过量的NaOH碱性溶液中呈桔红色,在540nm波长处有最大吸收,在一定浓度范围内,还原糖的量与反应液的颜色强度呈正比,通过比色法可测定样品中的还原糖含量。

2、DNS法测定还原糖时需要注意哪些事项?

DNS法测定还原糖时需要注意以下事项:DNS试剂应现配现用,存放时间过长会影响显色效果;加热过程中要注意防止溶液爆沸溅出,确保安全;比色时,溶液应冷却至室温,以保证吸光度测量的准确性;不同品牌的DNS试剂可能存在差异,使用前需进行校准或验证。

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